实验方法
动物实验常用技术标准操作规程（七）&实验动物经腹腔注射给药（4）
2015年02月26日
来源：实验动物管理与实用技术手册
作者：徐国景 唐利军 易工城 孔利佳
责任编辑：admin
摘要：注射部位一般选择在实验动物腹部左下1/4处,因为该区域没有重要的生命器官。注射时,为了防止药物进入肠道,仅针头的尖端穿透腹壁即可。
注射部位一般选择在实验动物腹部左下1/4处,因为该区域没有重要的生命器官。注射时,为了防止药物进入肠道,仅针头的尖端穿透腹壁即可。
注意事项:针头刺入部位不宜太接近上腹部或太深,以免刺破内脏;针头与腹腔的角度宜不太小,否则容易刺入皮下;所用针头不宜太粗,以防止药液从注射针孔流出;注射后应用无菌棉按一下注射针孔,也可以用不带钩的小银子轻捏注射针孔。为避免注射后药液从针孔流出，也可以在注射时先把针头在皮下向前推2/3距离,然后以一定角度刺入腹腔。
1. 大鼠、小鼠的腹腔注射
(l) 根据实验要求配好药液,按所称体重计算给药体积,大、小鼠的一次注射量分别为0.1～0.2ml/l0g体重和1.0～2.0ml/100g 体重。
(2) 左手用沾湿的拇指和食指紧紧抓住小鼠颈部背侧的皮肤,手掌呈杯状紧握鼠背使腹部皮肤伸展,同时压住尾根,固定好动物;大鼠则用左手的大拇指、食指和中指从它的前肢和头部后肢抓住大鼠,既要紧又要轻柔,同时用身体抵住大鼠的两后肢使之固定,使腹部向上并伸展。
(3) 右手将大鼠用5ml注射器装上6～7#号针头抽取药液,小鼠用1ml注射器装上5～6#号针头抽取药液,放置在实验台待用。也可应用相应规格的一次性注射器操作。
(4) 常规75%酒精棉球消毒注射部位。
(5) 右手拿取桌上己抽好药液的注射器,在距下腹部腹中线稍左(右)下(约1cm)的位置 附头刺入皮下后,继续进针3～5mm,再以45°角刺入腹腔,针尖通过腹肌后抵抗力消失,固定针尖。
(6) 回抽注射器,观察有无回血或尿液,如无则可缓慢推注药液;如有则拨出针头重新操作。
(7) 注射完毕,以消毒干棉球轻压针眼处,抽出针头,防止药液外渗。将鼠归笼或作其他观察。
为避免刺破内脏,可将动物头部向下,尾部提高,使脏器移动到横脑处再操作。
2. 豚鼠的腹腔注射
(l) 根据实验要求配好药液,按所称体重计算给药体积,一次给药量不超过4ml。
(2) 采用1～2ml一次性注射器或用1～2ml注射器装上7# 针头,抽取受试药物。
(3) 左手以稳准的手法迅速扣住豚鼠背部,抓住其肩脚上方,将手张开握住躯干。
(4) 将豚鼠腹部朝上,使其固定在手掌中,常规消毒皮肤。
(5) 右手持己装有受试药的注射器,将针头从左(右)下腹部(外1/3处,避开肝脏和膀胱)以端方向刺入腹腔。
(6) 抽注射器,如无回血或尿液,表明针头未刺入肝，膀脱和脏器,则可固定注射器,进行注射;如有则抽出针头重新再束。
(7) 注射完毕,抽出针头,干棉球按压针眼后将豚鼠放回笼中或作其他观察。
3. 家兔的腹腔注射
家兔在进行腹腔注射给药时,让助于固定好家兔,使其腹部向上,头低腹高,两人配合完成以下操作:
(1) 根据实验要求配好药液,按相应的标准操作规程抓取家兔,并按所称体重计算给药体积,以配备6～7#针头的 5ml一次性注射器(注射器容量随注射体积定)吸取药液备用。
(2) 助手将实验兔固定,使其腹部暴露,操作者用酒精棉球消毒注射部位,持己抽好受试脏射器,在兔下腹部距白线两侧约1cm处(避开肝脏和膀胱),以约45°角刺人腹肌,针尖穿过眼肌进入腹腔后,操作者手可感到针头前抵抗力消失,深度约0.5～1.0cm左右,在此处保持针尖不动。
(3) 将注射器回抽,观察是否有回血或内容物出现,若有则提示针头可能误入血管、膀胱或肠腔,应立即将针头抽出重新操作;若无上述现象发生,则可缓慢推注药液。
(4) 注射完毕将针头拍出,以消毒干棉球按压针眼数秒,将家兔放回笼中或作其他观察。
4. 犬的腹腔注射
(1) 操作者按相应的标准操作规程,将动物从笼中取出,称重。
(2) 持10～30ml注射器,配置6#针头,按动物体重抽取已配制好的药液。
(3) 让助手抓住动物,使其腹部向上。 75%酒精棉球常规消毒注射部位后,在犬下腹部线左侧或右侧旁1～2cm 处将注射针头刺入皮肤、腹肌,进入腹腔时有松空的感觉,回抽针栓观察是否插入脏器或血管,若无血、液体等说明已插入腹腔,固定针头缓慢推注药液,注射如抽出注射器,以消毒干棉球压住针眼数秒后将动物放回原饲养笼中。
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