广东省实验动物信息网

   1 实验兔

   1.1 固定 

   将兔从笼中取出，放入合适大小的兔固定架进行固定。

   1.2 操作

   用75%酒精棉球对兔耳给药部位进行消毒。用合适大小的注射器抽取药液或将静脉输液器准备妥当，接合适规格（一般为6#或7#）静脉输液针头。一手固定兔耳，一手持针头，以合适角度由远心端刺入血管，沿血管方向前进合适距离后固定针头。回抽针栓或打开输液器开关，有回血即可进行给药。给药结束后，以消毒干棉球按住给药部位，将针头抽出，继续按紧棉球进行止血。

   2 小鼠

   2.1 固定  将小鼠放入小鼠固定器内进行固定。

   2.2 操作  用75%酒精棉球反复擦拭鼠尾消毒并使其血管扩张，并将用后棉球丢进污物桶。捏住尾根部，转动鼠尾使已选好的侧面朝上，用手指夹住鼠尾端部，使其固定。鼠尾的静脉可交替使用，如需多次注射，应先从尾远端开始选择注射部位。右手持已抽好药品的注射器，以食指固定注射器前端，选尾基端尾的1/3处，对准血管中央以合适角度进针，再将针头抬起，保持尽量与尾部平行的角度刺入。当针头在尾静脉平行推进少许后，连针头和鼠尾一起捏住，进行固定。右手拇指缓缓推动注射器活塞，如无阻力同时可见静脉内血液被注射进入的药液向前推进，表示针头已进入静脉，这时可将药物完全注入。如有阻力并观察到注射部位出现白色皮丘，应重新抽药、穿刺。注射完毕，取一干棉球压住注射部位，迅速将注射器拔出，并持续按压以止血。将用后棉球和注射器丢进指定污物桶。

  3 大鼠

  3.1 固定 由助手协助固定大鼠尾根部，防止大鼠转动或回转。用无菌注射器抽

  3.2 操作 

   ① 用75%酒精棉球反复擦拭鼠尾消毒并使其血管扩张，并将用后棉球丢进污物桶。以左手拇指和食指捏住大鼠尾近端，转动鼠尾使已选好的侧面朝上，再以环指和小指夹住鼠尾远端，以中指从下面托起鼠尾使其固定。右手持已抽好药品的注射器，以食指固定注射器前端，选尾基至端尾的1/3处，对准血管中央以合适角度进针，再将针头抬起，尽量保持与尾部平行的角度刺入。鼠尾的静脉可交替使用，如需多次注射，应先从尾静脉远心端开始选择注射部位。当针头在尾静脉平行推进少许后，用左手大拇指、中指、环指将针头和鼠尾一起捏住，进行固定。回抽注射器针栓，如有回血，即可进行给药，根据药物特性调节给药速度。如无回血或推动注射器活塞有阻力并观察到注射部位出现白色皮丘，应依照本规程重新抽药、穿刺。注射完毕，取一消毒干棉球压住注射部位，迅速将注射器针头拔出，并持续按压以防止药液流出并止血。

  ② 浅背侧跖静脉注射方法：由助手用一手握住大鼠的颈背部成仰卧位，用另一手的拇指和食指夹住大鼠注射侧后肢的大腿部，将腿呈伸展状态，压迫静脉。操作者一手用拇指和食指捏住大鼠注射侧脚掌前部，用酒精棉球擦拭消毒后，可见粗大的浅背侧跖静脉，另一手持连有0.45号静脉输液针的注射器沿向心方向刺入血管，针头顺血管平行方向刺入3～5mm，见有回血即可注射。注射完后，用干棉球压迫针眼，以防流血。

  4 犬

  4.1 固定 将犬固定到固定架上。

  4.2 剃毛采用电推剪或弯头剪刀将注射部位被毛剪去，尽量剪短，勿伤及皮肤。

  4.3 操作

      用75%的酒精棉球对注射部位进行消毒。用胶管扎紧注射部位静脉的向心端，使血管充盈。抽取注射用液体，排出注射器内的气泡。操作者右手持注射器，从静脉远心端将注射针头以大约30°角刺入后以平行于血管的方向轻轻推入，若无阻力，表示针头进入血管，回抽注射器针栓，如有回血，此时松开胶管，并将针头再刺进少许，然后以左手将针头固定好，右手慢慢将药液缓缓推入。如果没有特殊要求,推药速度为3～5 ml/min。注射完毕后，用消毒干棉球压住注射针头，然后迅速拔出注射针头，继续按紧棉球，进行止血，时间大约1 min左右，必要时可用医用橡皮膏缠绕棉球压迫止血。