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实验方法

小型猪围手术期护理

2016年10月19日 浏览量: 评论(0) 来源:《小型猪医学研究模型的建立与应用》 作者:陈华主编 责任编辑:yjcadmin
摘要:小型猪围手术期护理

(一)静脉输液

1.静脉输液的目的  麻醉期间补液的目的包括维持开放静脉通路;为氧输送提供循环支持;补充可感知的液体损失;补充无感知的液体损失;补充进行性丢失体液。在紧急状况下,静脉通路方便给药,能够确保药物迅速发挥作用。为了维持有氧代谢,向组织输氧非常重要,但要保证有效地氧被输送到组织,不仅需要足够的心输出量,还需要足够的血红蛋白与氧结合。因此,仅仅提供足够的循环血量还不够,还要提供充足的血红蛋白浓度。麻醉动物和清醒动物有同样的液体需要量,而且需要量根据生理状态(如年龄)和病理状态(如心脏病)而有所不同,因此,应该为不同状态的动物制订不同的补液疗法。

2.常用的输注液体

(1)0.9%氯化钠溶液(生理盐水):生理盐水是等渗非平衡电解质溶液,其中含有Na+、Cl-和水,是兽医临床最为常用的体液补充剂。对以丢失水和电解质的等渗性脱水都十分有效。

(2)5%葡萄糖溶液:这种晶体溶液是葡萄糖在水中的等渗溶液。输入之后,溶液中的葡萄糖很快被细胞吸收并参与代谢。葡萄糖分子仅发挥暂时性的渗透作用,因此,5%糖溶液不适用于扩容,因为释放的游离水会被均匀地分布到机体的各处。

(3)林格尔溶液:林格尔溶液是等渗平衡的电解质溶液。除水之外,林格尔溶液内还含有钠、钾、氯化物和钙。林格尔溶液所含成分与细胞外液相似,因此,它是最常用的含钠晶体溶液,输注时可恢复细胞外液容量,有利于维护细胞的正常功能。同时还具有血液稀释、降低黏稠度、改善微循环、补充电解质和纠正酸中毒等作用。

(4)哈曼溶液(乳酸盐林格尔溶液):哈曼溶液是等渗电解质平衡溶液,电解质平衡液与血浆电解质浓度相似。除水分之外,哈曼溶液包括钠、钾、氯化物、钙、乳酸盐。乳酸盐可由肝脏代谢形成碳酸氢盐,如果肝脏代谢乳酸盐能力较差,则容易引起酸中毒。因此,可以利用类似的含其他缓冲盐的电解质平衡液,如醋酸盐,它们不依赖于肝脏功能而代谢成碳酸氢盐,因此,可用于肝功能受损的动物。此外,哈曼溶液含有钙,因此,不能与血液产品混合注射,否则可迅速形成血凝块。

(5)0.18%氯化钠-4%葡萄糖(葡萄糖盐水):如果长时间输入葡萄糖盐水溶液,则必须补充钾。葡萄糖盐水不利于血管膨胀,因为释放的游离水会被平均地分布到体内。

(6)7.2%的氯化钠溶液(高渗盐水):7.2%的氯化钠溶液是高渗的电解质非平衡溶液,高渗盐水含有Na+、Cl-和水。主要用于血容量的快速补充,并具有一定增强心脏收缩性和排出量的作用。

3.液体输注速率  许多麻醉药物都是由肝脏代谢并由肾脏排泄,充足的体液可以保证这些过程得以顺利进行。因此,在麻醉期间和苏醒阶段对动物提供循环支持非常重要。对于进行全身麻醉的动物,常规平衡等渗晶体的输液率应为5~10ml/(kg·h)。对麻醉动物来说,这个“维持率”比未经麻醉的健康动物用量[1~2ml/(kg·h)]要高一些,这样不仅能够补充可感知或无感知的体液丢失(可能会增多),而且还可以在麻醉药产生血流动力学效应时提供循环支持。有些专家推荐在麻醉开始时使用正常的液体维持率[2ml/(kg·h)],在手术过程中根据感观识别手术的严重程度(轻度、中度和重度手术创伤)增加用量,每次增加5ml/(kg·h)、10ml/(kg·h)、15ml/(kg·h)。但无论哪种用量,都必须时刻监视动物对补入液体的反应调整输液率。

在临床麻醉过程中,对原本液体缺失就十分显著和(或)麻醉前未纠正而继续丢失体液的动物,可适当地增加麻醉维持率,但对于缓慢性体液丢失的动物,采取迅速补液会引起血浆蛋白及电解质的稀释。因此,建议在麻醉后最少4~6小时再选择这种补液方式。

(二)保温

小型猪手术过程中的备皮,为了外科手术需要而进行的消毒,化学物质引起的外周血管扩张,手术过程中的补液影响和大量冲洗液都引起小型猪的体温降低。整个手术过程中应当持续的检测直肠温度,对小型猪而言应使其体温不低于36℃(正常体温范围:38~39℃)。

围手术期体温的护理主要从以下几个方面实施:第一,规范手术室的温度,手术过程中手术室温度不宜太高,否则不但手术医生会有不适,而且也会增加细菌繁殖,造成手术创口污染的风险。手术室温度最好控制在24℃左右,相对湿度保持在40%~60%为宜。第二,术前、术后任何时候都要减少暴露动物,动物在进出手术室的途中,应给予足够的保暖,使之与周围的冷空气隔离。第三,手术床应具有加热功能或者给动物使用电热毯加热。第四,实施麻醉或手术时,施术部位暴露,不施术部位(特别是四肢及输液部位)用保暖性能好的被服或手术巾遮盖,可减少皮肤散热。第五,输注预热36~37℃的液体或血液制品是安全、舒适的,且对药液成分无影响,可有效地预防体温降低,但一定要注意部分药物是不能加热的。第六,术中需冲洗体腔及伤口时,应把冲洗液加温至37℃左右,动作应轻柔防止动物身体覆盖巾被冲洗液浸湿,避免体内过多热量散失,防止术中体温下降。

(三)麻醉监护

麻醉监护通过监测心率与血压而进行,这种方法要比观察肌肉和眼睑反射更为准确。由于小型猪的麻醉过程中麻醉剂非常容易诱发心律不齐,因此,在整个手术过程中都应对其进行ECG监护。在诱导麻醉期,由于麻醉药的作用,存在呼吸抑制随后氧不足与高碳酸血症的危险。此期间的监护应检查脉搏,观察黏膜颜色,指压齿龈观察毛细血管再充盈时间,以及呼吸深度与频率等。

1.麻醉深度  通过眼睑反射、眼球位置和咬肌紧张度来判断麻醉深度是常用方法。在小型猪的麻醉中不易观察到眼睑反射,这主要是因为小型猪的眼眶较深。小型猪的眼球不再偏转而是处于中间的位置,且凝视不动,瞳孔又放大,对光反射微弱,甚至消失,乃是高深度抑制的表现,表示麻醉已过深。肌肉的反射状况可以根据在小型猪蹄冠、尾部和耳尖实施挟按进行观察。另外,下颌骨处肌肉收缩被认为是相对比较准确的麻醉监护点,当下颌骨肌肉呈现紧张、僵硬时,通常指示麻醉深度变浅。

2.呼吸  重点注意观察呼吸的通畅度、呼吸频率和呼吸的幅度。若是呼吸道通畅度不好,动物会表现呼吸困难,胸廓的呼吸动作加强,鼻子张度加大,甚至黏膜发绀。吸入麻醉时,可用潮气量表测量潮气量。呼吸变深、变浅和频率增快等都是呼吸功能不全的表现。如发现潮气量锐减,继之很快会发生低血氧症。潮气量的减少,是麻醉时呼吸重度抑制的表现。可视黏膜的色泽可反映当前的氧气供应和外周循环功能情况,观察齿龈以及舌部的黏膜颜色来粗略地判断动物缺氧的程度。但是,在贫血动物因氧饱和度极低也会表现出黏膜发绀症状,可对动脉血氧气和二氧化碳分压进行测定,从而判断动物吸入氧气和排出二氧化碳是否满足需要。

3.循环系统  主要是应用无创伤方法,如摸脉搏、听诊、测定血压和心电图仪监护。在手术中发现脉搏频数,心音如奔马音,结膜苍白,血管的充盈度很差,是休克的表现,心动过缓多由于麻醉的过量、过深,反射性血压下降引起。

4.全身状态  主要注意神志的变化,对痛觉的反应以及其他一些反射,如角膜反射、眼球位置等。动物处于休克状态时,神志反应很淡漠,甚至昏迷。

5.体温  麻醉一般都会使动物体温下降1~2℃或3~4℃。动物的应激反应强烈或者对某些药物的不适应可发生高热现象。

6.体位变化  由于体位的改变可对呼吸和循环带来不利的影响。由于肢体受到压迫或牵张,可造成肢体的麻痹。

(四)小型猪常用急救方法

由于动物的个体差异或基础疾病的存在,小型猪在外科手术或麻醉过程中易于出现危险情况,及时并恰当的抢救措施对于术中意外的补救、挽救动物生命、保留动物实验数据和材料具有重要意义,以下介绍几种危险情况的急救方法。

1.呼吸衰竭  小型猪手术过程中由于手术操作或者麻醉过量引起呼吸衰竭时,应该立即对小型猪实施气管内插管术(方法参见气管插管),插管结束后,迅速将导管与人工呼吸气囊相连,一人负责捏人工呼吸气囊(约15次/分)。另一人迅速打开呼吸机与外置氧气,设置好呼吸机各项参数,迅速将人工呼吸气囊与导管脱离,然后将导管与呼吸机连接,对动物进行辅助呼吸。接通呼吸机后,对实验动物可肌肉注射尼克刹米注射液10mg/kg以兴奋呼吸中枢,静脉滴注呋塞米注射液1~2mg/kg加速药物的代谢排出,另外辅以静滴适量碳酸氢钠注射液以缓解酸中毒。

2.血容量下降  小型猪手术过程中由于手术操作动物失血过多造成心输出量降低,血压下降时,应根据失血的多少给以不同的急救措施。当失血较少时可以加速静脉通道内液体流量以扩充机体的血容量;当失血过多时可以静滴羟乙基淀粉以扩充血容量,升高血压;如果大量失血造成血压迅速下降可以静注升压药(如多巴胺1~5μg/min、盐酸去氧肾上腺素等)。

3.心功能衰竭  小型猪手术过程中由于手术操作造成心功能衰竭时应根据不同情况对实验动物采取不同的抢救措施。若大量失血造成心功能衰竭时可按血容量下降措施实抢救;若心脏发生室颤应当采用心电除颤仪进行除颤;若心脏骤停可以用双手按压胸部进行心脏复苏,也可静脉或心脏注射盐酸肾上腺素1mg。

小型猪手术过程中发生的危险情况是复杂多样的,以上是常见的几种情况,在小型猪手术过程中应根据实际情况联合应用对濒危动物实施抢救,小型猪常用的心肺复苏药物参见附录8。

 

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