(一)皮下注射

注射时以左手拇指和示指提起皮肤，将连有5(1／2)号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位豚鼠在后大腿的内侧或小腹部，大白鼠可在侧下腹部，兔在背部或耳根部注射。

(二)皮内注射

皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和示指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1／2)细针头紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

(三)肌内注射

肌内注射应选肌肉发达、无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌内注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5(1／2)针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。

(四)腹腔注射

用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左(或右)下腹部刺入皮下，使针头向前推0.5～1.0cm，再以45⁰角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液(图12-9)，为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。

(五)静脉注射

1．兔  兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动脉，耳外缘为静脉。内缘静脉深且不易固定，故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手示指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开示指和中指，将药液注入(图12-10)，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。

图12-9  小鼠腹腔注射方法

图12-10  家兔耳缘静脉注射方法

2．小白鼠和大白鼠  一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，左、右两侧及背侧各一根，左、右两侧尾静脉比较容易固定，背侧一根也可采用，但位置不容易固定。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用乙醇擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和示指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连4(1／2)号细针头，使针头与静脉平行(小于30⁰)，从尾下1／4处(距尾尖2～3cm)处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射(图12-11)。

图12-11  小鼠尾静脉注射方法

几种常用的动物不同给药途径的注射量可参考表12-2。

表12-2  几种动物不同给药途径的常用注射量(ml)

(六)经口给药

在急性试验中，经口给药多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等动物。小鼠、大鼠(或豚鼠)用输血针头或小号腰穿针头，将其尖端斜面磨平，用焊锡在针尖周围焊一圆头，注意勿堵塞针孔，即成灌胃针；亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特制的塑料毛细管，作为导管。灌胃时将针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食管。动物应固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔出，以免损伤或穿破食管以及误入气管。

一般当灌胃针插入小鼠3～4cm，大鼠或豚鼠4～6cm后可将药物注入。常用的灌胃量小鼠为0.2～1ml，大鼠为1～4ml，豚鼠为1～5ml。

(七)其他途径给药

1．呼吸道给药  呈粉尘、气体或雾状存在的药物或毒气，均需要通过动物呼吸道给药。如一般实验时给动物乙醚作吸入麻醉，给动物吸一定量的氨气、二氧化碳等观察呼吸、循环等变化；给动物定期吸入一定量的二氧化硫、锯末烟雾等可造成慢性气管炎动物模型等；特别在毒物学实验中应用更为广泛。

2．皮肤给药  为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法。如家兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。

3．脊髓腔内给药  此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。

家兔椎管内注射方法：将家兔做自然俯卧式，尽量使其尾向腹侧屈曲，用粗剪将第7腰椎周围背毛剪去，用3％碘酊消毒，干后再用79％乙醇将碘酒擦去。在兔背部椎骨脊连线之中点稍下方触及第7腰椎间隙(第7腰椎与第1骶骨椎之间)，插入腰椎穿刺针头。当针到达椎管内时(蛛网膜下腔)，可见到兔的后肢跳动，即证明穿刺针头已进入椎管。这时不要再向下刺，以免损伤脊髓。固定好针头，即可将药物注入。

4．小脑延髓池给药  此种给药都是存动物麻醉情况下进行的。

5．脑内给药  此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。小鼠脑内给药时，选套有塑料管、针尖露出2mm深的5(1／2)针头，由鼠正中额部刺入脑内，注入药物或接种物。给豚鼠、兔等进行脑内注射时，须先用穿颅钢针穿透颅骨，再用注射器针头刺入脑部，再徐徐注入被检物。注射速度一定要慢，避免引起颅内压急骤升高。

6．直肠内给药  此种给药方法常用于动物麻醉。家兔直肠内给药时，取灌肠用的胶皮管或用14号导尿管代替。在胶皮管或导尿管头上涂上凡士林，由助手使兔蹲卧于桌上，以左臂及左腋轻轻按住兔头及前肢，以左手拉住兔尾，露出肛门，并用右手轻握后肢，实验者将橡皮管插入家兔肛门内，深度为7～9cm，如为雌性动物，注意勿误插入阴道(肛门紧接尾根)。橡皮管插好后，将注射器与橡皮管套紧，即可灌注药液。

7．关节腔内给药  此种方法常用于关节炎的动物模型复制。兔给药时，将兔仰卧固定于兔固定台上，剪去关节部被毛，用碘酒或乙醇消毒，然后用手从下方和两旁将关节固定，把皮肤稍移向一侧，在膑韧带附着点处上方约0.5cm处进针。针头从上前方向下后方倾斜刺进，直至针头遇阻力变小，然后针头稍后退，以垂直方向推到关节腔中。针头进入关节腔时，通常可有好像刺破薄膜的感觉，表示针头已进入膝关节腔内，即可注入药液。动物最大给药量可参考表12-3。

表12-3  常用实验动物的最大给药量和使用针头规格