(1)复制方法  首先将无水乙二胺(EDA)67ml加双蒸水500ml，再加6mol/L浓度的HCl 350ml(冷却至25℃)，调整pH为4.75，加牛血清白蛋白(BSA)5g溶于25ml双蒸水中；然后加无碘EDC(碳化二亚胺)1.8g，维持原温度和 pH值条件下搅拌，2h后加4mol/L醋酸缓冲液30ml终止反应，在4℃双蒸水中透析48h，制备成带阳电荷牛血清白蛋白(C-BSA)，冷冻干燥后备用。用体重为2.5kg左右的新西兰兔，经其耳缘静脉注射预先制备的C-BSA 1mg，大肠杆菌内毒素0.15μg(溶于2ml PBS中)，此为预免疫；1周后再每日从耳缘静脉注射C-BSA 25mg，持续5周，作致病免疫；5周后再隔日经耳缘静脉注射C-BSA 25mg，持续5周，整个造模时间为10周。预免疫前及模型制作过程中，分别作包括24h尿蛋白定量，血尿素氮(BUN)、肌酐(SCr)、血内生肌酐清除率(V/t)等肾功能指标测定，并在实验预定时间及结束时，麻醉放血处死动物，取肾脏组织标本，置放于固定液中，作常规组织切片，HE染色，光镜下观察。同时取肾组织作电镜标本，透射电镜下观察。

(2)模型特点  致病免疫注射1周后，模型动物24h尿蛋白定量显著上升，2周后BUN、SCr开始上升，6周后继续升高，CCr则明显下降，到10周后动物肾功能显著恶化。镜下病理组织学观察模型动物肾小球出现不同程度纤维化及硬化，小球间距缩小，其囊腔内可见渗出物，毛细血管丛萎缩；肾小管上皮细胞变性，有的管腔内有蛋白管型。电镜超微结构观察，肾小球基底膜不规则增厚，肾小球上皮细胞足突融合或消失；肾小球间质扩张，间质内有成纤维细胞增生，系膜区有大量细胞沉积。本模型制作方法复杂，造模时间长，动物易于死亡。

(3)比较医学  用阳离子化牛血清白蛋白(C-BSA)可在3～4周内诱发兔膜性肾炎，并已被广泛应用于肾炎的动物实验研究。本模型应用C-BSA在10周内可成功诱发模型动物出现CRF的临床症状，类似于临床上人类高发病率、由免疫复合肾炎进展至CRF的动物模型，模型疾病表现特征演变过程与人类CRF的自然发病及病程、转归相似，适用于CRF发病机制和药物疗效方面的研究。

当机体出现CRF时常伴随内环境稳定功能及内分泌功能紊乱，使机体出现各种临床症状。近年来，CRF动物模型在各种制作方法上均取得了相当大的进展，在CRF模型的应用研究方面也获得了令人满意的效果。但目前仍偏重于CRF模型细微局部的研究，有关CRF动物模型整体的实验研究相对开展较少，且诊断和疗效标准界定模糊。由于人与动物之间存在的差别，用临床上人类CRF的分期标准来评价CRF动物模型，具有一定局限性。利用肾毒性药物破坏肾组织来建立CRF动物模型，是目前最为常用也是病理特征最接近临床CRF的方法之一，但存在着病变特征及造模时间上的局限性。至于应用物理方法、免疫学方法来破坏肾组织建立的CRF动物模型，或以结扎肾动脉、电热灼伤及冷冻等手段破坏肾组织建立的CRF动物模型，则因其造模机制的原因与人类CRF吻合程度相对较差，这些模型的实用性也不如肾毒性引发的CRF动物模型。因此，采用何种CRF模型来开展研究，应根据实验目的和需要而定。