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实验方法

动物血压及心电图的测定

2013年07月22日 浏览量: 评论(0) 来源:丁香园 作者:佚名 责任编辑:lmjinfo
摘要:血压和心电图是重要的生理指标。动物血压、心电图的测量方法与技术是机能实验教学所要求的基本的技能之一,也是心血管生理学、药理学研究所必备的实验技术之一。

    血压和心电图是重要的生理指标。动物血压、心电图的测量方法与技术是机能实验教学所要求的基本的技能之一,也是心血管生理学、药理学研究所必备的实验技术之一。

    本节主要介绍常用动物血压、室内压及心电图的测量方法与技术。

    一、清醒大鼠的血压测定

    清醒大鼠的血压测定有多种方法。按是否进行手术分为有创和无创;按测定方式分为直接和间接,一般直接法都是有创的。

    直接法又分为导管法和换能器埋入腹腔遥测法,前者插入大鼠动脉的导管通过换能器与记录系统有连接,测量时清醒大鼠的活动受一定的限制,后者插入动脉的导管、换能器与记录系统无任何连接,测量时大鼠可自由活动。

    间接法一般是无创的,间接法有多种,常用的有鼠尾容积测压法和大鼠尾动脉脉搏测压法等等。目前,清醒大鼠血压测定方法多为大鼠尾动脉脉搏测压法。下面主要介绍大鼠尾动脉脉搏测压方法。

    1. 基本原理 大鼠尾部加压超过收缩压时,脉搏消失,压力减至收缩压时,脉搏出现,继续减压至舒张压时,脉搏恢复加压前的水平,通过检测这种脉搏变化时的瞬间压力,即为血压值。

    2. 实验动物与器材 大鼠,体重150~300g;尾动脉测压系统,系统由包括尾动脉测压仪、脉搏传感器、加压尾套、尾部加热器及动物固定装置等组成。

    3. 实验方法与步骤 不同厂家,不同型号的尾动脉测压系统操作步骤上有些小的差异,但基本操作步骤是一致的。

    (1)大鼠固定和加温:加温采用大鼠全身或鼠尾局部加温。固定一般采用有机玻璃制成的固定器。

    (2)确定起始脉搏水平:将加压尾套、脉搏换能器依次套在鼠尾合适位置。

    (3)测定血压:用橡皮球充气加压,使加压尾套内的压力升高至脉搏完全消失,在继续加压20mmHg左右,然后缓慢放气减压至脉搏信号恢复起始水平,此时可以从测压仪上或记录系统中读取收缩压、舒张压、平均动脉压和心率等。一般连测三次,取其平均值作为一个测量值。

    4. 注意事项

    (1)由于被测清醒大鼠活动受到限制,制动应激可影响血压准确性,为降低这种影响,一定要在正式实验前训练大鼠,使之适应测压环境和操作,除此之外,动物保温也可以使动物安静。

    (2)温度影响大鼠尾动脉的舒张,因此,在测量时大鼠的尾部应适当加温。一般控制在34℃左右。持续时间以10min为宜。

    (3)实践发现,加压尾套的宽度和位置影响测量值,加压尾套太小所测血压值偏高,其宽度太大则相反。因此,应根据动物体重大小选择适当宽度加压尾套。体重小于150g,加压尾套一般应以1.5cm为宜,体重在200g左右的以2.0cm为宜 ,体重大于300g以2.5~2.8cm为宜。

    加压尾套距鼠尾根部越远,血压值越低,以放在大鼠尾根部为宜。且每次测量必须放置同一位置。

    (4)减压速度可影响测压值,故放气时尽可能恒速。

    二、麻醉大鼠动脉血压的测定(直接测定法)

    麻醉大鼠动脉血压测定的常用方法有两种:一是采用颈总动脉插管测量血压,二是采用股动脉插管测量血压。

     实验动物与器材 家兔,体重为2kg左右;大鼠,体重为200~250g左右。20%氨基甲酸乙酯(Urethane)注射液或者1.5%戊巴比妥钠(Phentobarbital Sodium)注射液,1%普鲁卡因注射液,0.3%肝素生理盐水注射液,常用实验器械一套,家兔或者大鼠实验台一个,用于家兔或者大鼠的聚乙烯医用塑料导管(家兔用导管外径为2mm,内径为1.5mm;大鼠用导管外径为1mm,内径为0.8mm),压力换能器及其多通道生理信号采集记录仪器。

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