1．实验动物  一般选用体重300g左右的雄性大鼠。

2．模型制备方法  予5％戊巴比妥钠腹腔麻醉(50mg/kg)，仰卧固定于手术台上。触及大鼠心尖搏动最明显的肋间，剪开皮肤、肋间肌，挤出心脏，于肺动脉圆锥与左心耳交界处找到前降支，在距根部2mm处用丝线结扎，迅速将心脏送回胸腔，并快速挤压胸廓，直至动物回复自主呼吸，缝合胸壁肌肉及皮肤(小窍门：左冠状动脉起源于主动脉，并靠近肺动脉窦的左缘，走行于肺动脉窦和左心耳之间，呈头尾斜行走行2～3mm后开始分支，埋于心外膜下心肌中，通常看不到。因此结扎时将丝线穿于肺动脉窦，在距离肺动脉瓣2mm处从肺动脉窦与左心耳末端连线的中部穿出，约缝合5mm宽的心肌，以保证结扎住动脉。结扎的动作要快，尽量减少心脏置于胸腔外的时间)。

3．研究结果的评价

(1)心脏功能评价：经颈动脉插管，连接多导生理记录仪可以记录心率，血压，左心室内压和等容收缩期压力微分(dp/dt)，多用于急性实验。部分实验室可以提供小动物专用超声仪，对心脏功能进行检测，可以保证慢性实验的需要。

(2)大体病理：可半定量评估梗死心肌的面积，常用四氮唑蓝(TTC)染色。动物处死前经静脉插管注入0.5％伊文斯蓝溶液，正常心肌染成蓝色，梗死和缺血心肌不着色。处死动物，迅速取下心脏，用滤纸吸干水分，置入-20℃冰箱冷冻20分钟后取出，将左心室部分垂直长轴切成2～3mm的横断片，浸入2％TTC溶液，置入37℃水浴反应30分钟。缺血心肌染成砖红色，梗死心肌不着色。称重每一心肌切片，并对切片照相，用图像分析系统对每一切片的颜色进行分析，用梗死区占左室总面积的百分比表示，求所有切片所得数值的加权平均。

(3)组织学：根据研究需要选择免疫组化、免疫荧光等方法检测目标物质。