1.样品处理  将试管按血清样品、血浆样品、血液样品、组织匀浆样品和尿液样品分类、编号，每只鼠在每类样品中编号相同，将处理后的样品放入试管中。

2.点样

(1)取1张醋酸纤维膜(6～8cm)确定光、毛面，在毛面上距边2cm处用铅笔做一标志性平行线。

(2)浸膜：用竹夹子将膜在液中浸透，避免膜上出现气泡，取出浸透后的膜夹在两层滤纸中，吸干余液。

(3)用微量注射器，将试管中的样品滴置采样板上，每滴1个样品，微量注射器用蒸馏水清洗3次，再采下一个样品。

(4)将醋酸纤维膜标志面向上，置于点样板上。

(5)用采样器在采样板上采样后，再在点样板的醋酸纤维上点样，每点1次，样量为0.3μl，通常点2次。

3.电泳  用竹夹子将点样的薄膜平贴在阴极端电泳槽支架的滤纸桥上(点样面朝下)，另一端平贴在阳极端支架上。注意薄膜紧贴在绷直的滤纸桥上，中间不能下垂。如一电泳槽中同时安放几张薄膜，则薄膜之间应相隔几毫米。盖上电泳槽盖，使薄膜平衡10min。接通电泳槽。正确接通电泳仪的正、负极，注意电泳条件和泳动方向。在室温下电泳，在电泳扩展开25～35min后关闭电源。

4.染色方法

(1)醋纤膜直接染色法：多用于蛋白类如血红蛋白、清蛋白的电泳染色。电泳后取出纤维膜，在染色液中染10～15min，再用漂洗液(7％冰醋酸)浸洗数次，脱色，直至背景无色，电泳区清晰可见，取出放在滤纸上，再用风机吹干。

(2)醋纤膜酶显色板法：多用于同工酶类的染色。即用3ml 2％琼脂(50℃)与2ml显色液迅速混匀，均匀倒置在6cm×8cm的玻璃板上，制成酶显色板(注意膜与板之间气泡应排尽，但不能移动膜的位置)，移入37℃温箱，保温显色，至酶区带清晰时取下显色的膜浸入漂洗液中漂洗数次后，取出，干燥方法同前。

5.透明  待膜完全干燥后浸入透明液中3～5min，取出平贴于玻璃板上，完全干燥后即成透明的膜，其可用于光密度计上比测或作标本永久保存。国产醋纤膜建议选用无水乙醇、乙酸乙酯、冰醋酸混合液为透明液，混合比例为无水乙醇：乙酸乙酯：冰醋酸＝83：2：15。透明时间：30～40s。

6.结果判定  每一品系通过电泳的结果，排列整理它们的位点，列出带型图并与各品系标准带型图进行对照，标出相同与不同的生化标志，根据位点的变异情况判断被监测品系的纯合度。若一个品系两个或两个以上的位点发生变异，或在一个位点上出现杂合子，可以判断该品系已发生遗传污染。若一个品系在某个位点上的基因发生改变，而与该基因相邻的两个基因仍保持不变，或再进一步检查证明其他染色体的位点也未发生变化，则可认为基因的变化是由于突变所致。

附：常用近交系小鼠、大鼠的生化标记基因