一、豚鼠的获取

1.来源

参照小鼠的要求执行。

2.运输与接收

参照小鼠的要求执行。注意豚鼠对声音和温度敏感，运输时应考虑这些影响因素。豚鼠对环境变化也比较敏感，检疫观察期应比大小鼠延长，一般经5～7天的适应期后再投入实验。

3.健康状况观察与评价

参照小鼠的要求执行。

二、基本操作技术

1.抓取与保定

豚鼠性情比较温顺，易于抓取。一只手抓肩膀，手指夹住前肢提起，另一只手托起臀部，对妊娠鼠应小心操作防止造成流产。

固定豚鼠可用固定架或其他固定装置，固定后进行实验操作。

2.供试品给予方法

1)经口途径

胃管给药：使用灌胃针头沿豚鼠上腭壁插入食道，确认没有误入气管，投药后轻轻拔出胃管。

口腔给药：经口投喂固体药物时，可以把豚鼠放在实验台上，用左手从背部向头部握紧并固定动物，以拇指和食指压迫左右口角使其口张开。实验者把药物放在豚鼠舌根处，使动物迅速闭口而自动咽下。

2)经皮途径

豚鼠是皮肤过敏试验的常用动物，常采用背部脱毛、涂布药物的方法，利用专用马夹固定保护涂药部位。

3)注射途径

豚鼠皮下注射一般选择大腿内侧、背部、肩部等皮下脂肪少的部位，通常在豚鼠大腿内侧面注射。静脉注射对于豚鼠比较困难，可选择舌下静脉、阴茎静脉和大腿的隐静脉等部位。

其他注射给药，如肌内注射、腹腔注射、皮内注射、脑内注射等方式亦可应用，其操作要领参照小鼠的要求执行。

3.样品收集

采血：切割边缘耳静脉、剪尾或眼静脉丛均可获得少量血液。由于豚鼠皮肤较厚，外观血管不明显，静脉穿刺采血比较困难，一般可获得2～3ml血，隐静脉是较容易的采血部位之一。心脏穿刺是大量取血的方法，一般300～400g的豚鼠可取血10～15ml。在实验结束时，也可采用腹主动脉采血。采血需在麻醉状态下进行操作。

粪便、尿液的采集：一般使用代谢笼采集动物的粪便、尿液，通过特有装置将粪尿分开收集。

精液采集：参照大鼠的方法执行。

4.麻醉与镇痛

(1)吸入麻醉：参照小鼠的方法执行。

(2)注射麻醉：途径包括静脉注射、皮下注射、肌内注射、腹腔内注射等。由于豚鼠静脉注射给药难度较大，通常选择腹腔注射或肌内注射的途径给药。豚鼠常用麻醉药剂量与用法见表12-1。

5.安死术

淘汰动物或实验结束处理动物，应遵循动物福利与伦理的要求，对动物进行安死术，执行安死术的人员需经过培训。常用的方法包括以下几种。

(1)吸入法：参考小鼠的方法执行。

(2)过量麻醉法：参照小鼠的方法执行。

(3)放血法：通常采用腹腔注射麻醉(戊巴比妥钠，40mg/kg)后，股动脉放血直至动物死亡。

(4)断头法：采用专用断头器让豚鼠瞬间死亡。