方法一

1.造模材料  动物：Wistar大鼠，雌雄不限，体重150～250g；药物：氯胺酮，青霉素；器械：BL-420生物机能实验系统，动物人工呼吸机。

2.造模方法  Wistar大鼠用氯胺酮100mg/kg腹腔注射麻醉，口腔插管连通动物呼吸机，呼吸比1：1，频率80次/min，潮气量约14～16ml/kg。沿左侧胸骨旁斜行切口，依次切开皮肤、浅筋膜和深筋膜，并用止血钳钝性分离胸大肌和前锯肌交界处，在靠胸骨缘处用止血钳钝性分离第3、4肋间隙进胸，撑开肋间隙暴露心脏。用镊子提起心包壁层，然后用小剪刀小心剪开心包，棉签棒向上推开胸腺，在左心耳下缘与肺动脉圆锥间距主动脉根部约3mm处找到左冠状静脉，以此为标志，用医用无损伤缝合针穿过左冠状动脉前降支深部，进针深度为0.3～0.5mm，小心打结，观察心电图及结扎区域的变化。在两个以上肢体导联出现ST段上抬0.2mV以上并伴对应导联改变，肉眼观结扎区域变灰白，可初步判断手术成功。仔细检查心脏，如无出血即可关胸。术后肌内注射青霉素40万U以预防感染。

3.造模原理  通过结扎冠状动脉复制心肌梗死模型。

4.造模后的病理变化  术后12h心肌坏死区组织切片，见细胞轮廓仍保持完整，细胞质呈明显嗜伊红性，横纹消失，可见核固缩、破碎和核溶解，梗死区周围有嗜中性粒细胞浸润，呈典型的凝固性坏死改变。在正常心肌组织切片，可见心肌细胞形态完整，界限分明，细胞质中横纹清晰可见，细胞核呈椭圆形。术后2天可见肉芽组织从周围长入梗死灶内，病灶周围有白细胞和巨噬细胞渗出。术后2周梗死灶被肉芽组织取代变为疤痕。

5.注意事项  手术器械严格消毒，防止手术感染，手术创伤应尽可能小，严格无菌操作。

方法二

1.造模材料  动物：雄性SD大鼠，体重(200±20)g；药物：水合氯醛，青霉素；器械：BL-420生物机能实验系统，动物人工呼吸机。

2.造模方法  取大鼠，经10％水合氯醛0.24g/kg腹腔注射麻醉。无菌条件下气管切开、插管、呼吸机正压辅助呼吸(潮气量3ml，频率60次/min)。胸部去毛，消毒，沿左锁骨中线纵行切开皮肤2cm，在第4、5肋间钝性分离肌层，打开胸腔，剪开心包，轻压右侧胸廓，挤出心脏。在左冠状动脉前降支中上1/3处行结扎45或60min后再灌处理，随后把心脏放回胸腔。逐层关胸，待动物苏醒后拔气管插管。术后肌内注射青霉素每只10万U，维持1周。

3.造模原理  通过结扎冠状动脉再灌复制心肌梗死模型。

4.造模后的变化  镜下见：假手术组心肌未见异常。结扎后1天大鼠心肌梗死区边缘往往与周围心肌相互交错，因而边界不清，并有大量炎症细胞从周围向梗死区中央浸润，左心室壁厚度没有明显变化。结扎后1周后可见左室前壁形成边界清楚的圆形梗死灶，直径大小不等(1～3mm)、呈蜡黄色，梗死区心肌大量坏死，坏死心肌结构紊乱，炎症细胞浸润明显减少，但有少量散在心肌残存，部分梗死区出现肉芽组织，并伴随大量毛细血管增生，纤维化不明显。4周后，梗死区中央成纤维细胞逐渐减少，肉芽组织逐渐被疤痕取代。左心室壁厚度，模型组较假手术组明显变薄。冠状动脉结扎45min以上的大鼠心肌梗死病理变化过程更典型。

实验处理4周后评价心功能的变化发现：模型组主动脉收缩压(aortic systolic pres- sure, ASP)、主动脉舒张压(diastolic aortic pressure, DAP)、左心室收缩压(left ventricu- lar systolic pressure, LVSP)、±dp/dt max,显著下降，LVEDP明显升高。