1．猪房室传导阻滞模型制作  实验用小型猪，术前禁食12小时，戊巴比妥钠全身麻醉(30mg/kg腹腔注射)，气管插管，呼吸机辅助呼吸。连接肢体导联，持续心电监护。

(1)化学消融法：于右侧第3肋间小切口开胸，剪开心包暴露心脏，将电极缝合固定于左心室心外膜行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)。于房室交界区(房室沟)注射37％的甲醛或99％的无水乙醇1～1.5ml，心电监护示完全性房室分离，观察30分钟后仍未恢复房室传导，视为达到手术终点。逐层关胸，留置胸腔闭式引流。

(2)射频消融法：行右股静脉切开术，置入8F动脉鞘管和7F静脉鞘管，分别送入临时起搏电极至右心室行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)，送入可操控消融电极导管，于Koch三角处标测到清晰稳定的希氏束电位即放电消融，输出功率50W，放电时间30秒。若30秒内出现房室传导阻滞，再巩固消融30秒。如30秒内出现不完全性房室传导阻滞或加速性交界区心律，继续消融直到出现房室传导阻滞后再巩固消融30秒。体表心电图和腔内心电图显示房室分离视为达到手术终点。

化学消融方法对设备要求不高，但房室结定位比较困难，注射化学物质对心肌刺激会引起心律失常增加实验的难度，且术中术后的并发症(感染、大出血等)和死亡率高于射频消融组。射频消融术较化学消融法简便、安全且并发症少，有条件的实验室应优先选用射频消融术建立缓慢型心律失常模型。

2．犬房室传导阻滞模型制作  雄性比格犬，术前禁食12小时。在以7～10mg/kg异丙酚麻醉诱导前，肌肉注射0.2mg/kg布托啡诺和0.01mg/kg乙酰丙嗪。通过气管插管呼吸机吸入异氟烷(1.5％～2％)和氧气的混合气体进行持续全身麻醉。切开股静脉置入8F动脉鞘管和7F静脉鞘管，在X线透视下分别送入心内膜临时起搏电极至右心室行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)，送入消融电极导管。以消融电极导管记录最佳希氏束电图判断希氏束位置，然后向后转动导管到希氏束电位刚好消失处，以温控模式65℃放电消融30秒，出现短瞬交界区心动过速后，大约20秒钟即可形成完全性房室传导阻滞。巩固放电1～3次。观察30分钟，房室传导不恢复视为达到手术终点。