麻醉复苏期的处理是麻醉技术自然而必要的延续，处理不当延迟动物的麻醉苏醒时间，将加剧和延长麻醉及手术导致的代谢紊乱，甚至可致动物死亡，为此需向实验要求存活的动物提供适当的复苏环境和护理。

(一)术后疼痛的干预

有效缓解动物术后疼痛是术后麻醉复苏期处理的重要内容。术后疼痛可明显影响动物水和食物的摄入，减少动物的活动，胸部和腹部疼痛还可导致通气功能下降而发生低氧血症和高碳酸血症，增加动物的痛苦并延长恢复时间。应对能够反映动物疼痛的生理变量进行监测和评估，并使用适当的镇痛药物干预。术后镇痛药常有非甾体类抗炎药和阿片类镇痛药(麻醉性镇痛药)，有时也可应用局部麻醉药阻滞疼痛部位的感觉传导。

1.非甾体类抗炎药  主要有阿司匹林(aspirin)等。最大的不良反应是胃肠道功能的紊乱，特别是溃疡性出血、肾毒性及干扰血小板功能，但只在长时间应用后发生，术后2～3天内使用几乎无上述表现，但某些药物具有显著的胎儿致畸作用。阿司匹林糖衣片剂用于缓解轻度疼痛，对于骨骼肌痛最有效，而对内脏疼痛效果最差，对乙酰氨基酚(paracetamol)的片剂和混悬液宜广泛用于实验动物，但可引起猫中毒而禁用于猫。氟尼辛(flunixin)用于犬的术后镇痛效果甚佳，广泛用于大型动物如牛和马，其注射液和口服液均有应用。卡洛芬(carprofen)可有效缓解犬和大鼠的术后疼痛，对其他动物也有明显作用，口服和注射剂型均可。萘普生(naproxen)用于缓解犬的中度疼痛，常以片剂或混悬液口服给药。

2.阿片类止痛剂或麻醉性镇痛剂  阿片类制剂已广泛用于动物，用于缓解术后疼痛时对心血管系统的影响较小，但用于平衡麻醉时由于用量增大，可能发生心动过缓。吗啡等大剂量应用或快速静脉注射还可导致组胺释放引起外周血管舒张，引发严重低血压。阿片类药物用于麻醉前可诱发犬和灵长类动物的呕吐，但术后用药则较少发生。

吗啡在多数动物中作用持续2～4小时，容易成瘾；芬太尼在多数动物中的作用时间小于30分钟，用于术后镇痛应采取持续注射给药；阿芬太尼比芬太尼起效快但作用时间更短，更多用于术中的即时镇痛；丁丙诺啡(buprenorphine)的作用时间较长，为6～12小时。

3.术后镇痛药的给药方式  反复注射镇痛药不仅增加护理的难度，且对动物尤其是小动物会带来额外痛苦，因此最理想的办法是口服。由于通过向饲料或饮水中投入镇痛药可能受到动物在术后摄食、饮水减少的限制，且饲料和饮水的药物化也会提高费用，可将药物掺入可食用明胶丸，在术前训练动物采食不含药的明胶丸，术后动物即能通过该方式主动服食镇痛药，并且明胶丸中含有较高的水分，能够有效防止动物术后脱水。

(二)复苏环境

用于麻醉动物复苏的环境应有柔和但充分的照明以便观察动物，需要配备高强度照明设备供必要时使用。室内保持温暖和安静，由于此时动物的体温调节处于抑制状态，应给予略高于日常饲养的温度，成年动物维持在27～36℃，苏醒后可降至25℃，幼年动物应维持在35～37℃，苏醒后仍应维持在35℃，可在室温(21～25℃)的基础上应用加热灯、电热垫等，并应继续对动物进行体温监测。

小动物一般可置于日常饲养的笼中，并放置在柔软、保温、不会黏附于动物天然孔腔和手术伤口的垫料上，但不能使用木屑、刨花等作为垫料，这些材料容易黏附在动物的眼、鼻、嘴和伤口上，也容易被吸入引起窒息；有些刨花虽不至于被吸入，但质地硬而粗糙。采用纸巾可以解决上述问题，但动物在苏醒过程中会把纸巾推到一边，最终直接躺在笼底面上，体表还可能被粪尿污染。一般采用毛巾、毯子或者合成的专用衬垫，以及不会黏附于伤口的碎纸。兔和豚鼠在复苏中应置于具有平坦底面的塑料盒或硬纸盒中，而不能放在金属网底或栅条底的笼内。

(三)复苏期间常见状况的处理

1.呕吐和反流的处理  麻醉期间吞咽反射和咳嗽反射都受到抑制，在复苏期间逐渐恢复。对气管内插管的动物，在出现自主吞咽或咳嗽时可以拔去插管。

呕吐和胃内容物反流常发生于麻醉的诱导期或苏醒期，动物一旦吸入胃内容物可引起呼吸道梗阻、窒息甚至死亡，是一个潜在的严重问题。一旦发生呕吐，则应立即将动物头部置于低位，用吸引装置吸出口腔和喉部的呕吐物，可采用大口径导管和50ml空注射器制作简易的吸引器。如动物吸入呕吐物发生呼吸窘迫，则应立即输氧并进行通气，给予广谱抗生素，静脉注射皮质醇等。

2.呼吸抑制的处理  麻醉引起的呼吸抑制常持续到术后，抑制程度可能还有所加重但不易被察觉，直至发生严重的高碳酸血症和低氧血症，因此宜持续监测动物的呼吸功能，主要是脉搏氧饱和度。如存在明显呼吸抑制，可使用呼吸兴奋剂并进行吸氧治疗，对于放在孵箱中复苏的小动物，可向孵箱内持续供氧，而大动物可用普通吸氧导管固定于鼻前。

3.脱水的处理  术后液体摄入量减少导致脱水，将严重影响动物苏醒，多数动物24小时的液体需要量为40～80ml/kg，呕吐、腹泻或非正常体液丢失会增加该需要量。麻醉复苏期间应监测动物摄水量以预测脱水程度，严重脱水时皮肤弹性丧失，大动物可见黏膜干燥。此外，脱水也常反映于术后动物体重下降，通过术前和术后动物体重的变化可以为术后补液量提供较好的线索。动物意识完全恢复时可通过口服补充液体。这也是最理想的补液方式，如无法执行，可通过皮下注射或腹腔注射的方式补充(表3-1-18)。

4.排泄问题的处理  尿量减少可能是由脱水、尿道损伤或疼痛引起，如果膀胱充盈而动物不排尿，应进行导尿。动物不排便首先应考虑术前禁食的原因，其次可能是疼痛抑制了排便反应，特别是腹部手术后疼痛和抑制肠蠕动，也可能是麻痹性肠梗阻，必要时应进行灌肠帮助动物排便。

5.感染控制  采用无菌技术可最大限度地降低术后动物感染风险，加之有些动物对伤口感染抵抗力强，术后往往不再应用抗生素预防感染，但动物的伤口几乎不可避免地被粪尿污染，因此预防性地使用抗生素可在一定程度上减少感染概率，但需注意抗生素对一些实验动物有特殊的毒性。