1.1 腹主动脉采血

    将小鼠麻醉后用组织剪剖开腹部，分离出腹主动脉。一手持一次性注射器，将针头近乎平行（小于30°）刺入腹主动脉，另一手固定针头，一手缓慢抽动注射器，抽取所需量血液。取完血后，用棉球轻压针眼处，快速拔出针头。

 

1.2 眼眶静脉丛取血

    采血时用一手抓住鼠尾并提起，放在表面较粗糙的台面或笼具盖上，用另一手食指和拇指抓住小鼠尾巴移交给无名指和小指夹住，再用拇指和食指捏住双耳及头颈部皮肤固定，提起小鼠。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。一手持硬质毛细玻璃管，将毛细玻璃管与鼠眼球成约45°从眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180°使斜面对着眼眶后界。刺入深度约2～3mm，当感到阻力时即停止推进，同时将针向后略退，若穿刺适当，血液即自动顺着玻璃管流入离心管中。得到所需的血量后即可拔出玻璃管。

 

    优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。血流较快，采血量多，能在较短时间内采到3~5mL血。伤口较小，愈合较快。成功率高，死亡率低。缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。另外，多次使用易引起小鼠的感染。对后续试验结果存在一定影响。

 

1.3摘眼采血

    一般来说，可以三人配合取血。取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉小鼠的胡须。一人抓小鼠并用眼科弯镊摘眼球，一人用止血钳夹住小鼠的嘴部以固定小鼠头部，另一个人拿试管接血。成功关键在于固定好鼠头部。

 

1.4剪尾采血方法

    所需血量很少时采用本法。用一手抓住小鼠的尾根部提起置于实验台上，让其自然进入固定器内，使尾巴外露，用手先将尾巴尖部摩擦若干次（天冷时，应将室温提高到15～20℃），使尾部血管充盈。用一锋利刀片在尾尖部切开一段尾静脉，稍停片刻，尾静脉血即可流出，用手轻轻地从尾根部向尾尖挤捏，可以取到一定量的血。取血后，先用棉球压迫止血，并立即用6%火棉涂于伤口处，使伤口外结一层薄膜。也可采用交替切割尾静脉方法取血。用一锋利刀片在尾尖部破一段尾静脉，静脉血即可流出，每次可取0.3～0.5mL,供一般血常规实验。两根尾静脉可替换切割，由尾尖向根部切割。或将小鼠麻醉，按上述方法尾尖取血。

 

1.5心脏采血方法

    动物仰卧固定于鼠板上，用剪刀将心前区的毛剪去，用酒精消毒此处皮肤，左侧第3~4肋间，用一手示指摸到心搏，另一手持连有4～5号针头的注射器，选择心搏最强处刺穿，当针头正确刺到心脏时，鼠血液由于心脏跳动的力量，血自然进入注射器，即可取血。鼠类心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。

 

    优点：抽血快，血液不易凝集，心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要 　　缺点：心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血。

 

1.6断头采血方法

    实验者带上棉手套，用左手抓紧鼠颈部位，右手持剪刀，从鼠颈部剪掉鼠头迅速将鼠颈端向下，对准备有抗凝剂的试管，收集从颈部流出的血液，小鼠可取血0.8～1.2mL。

 

1.7颈动静脉、股动静脉采血方法

    麻醉动物背位固定，一侧颈部或腹股沟部去毛，切开皮肤，分离出静脉或动脉，注射针沿动静脉走向刺入血管。20g小鼠可抽血约0.6mL。也可把颈静脉或颈动脉用镊子挑起剪断，用试管取血或注射乳嘴抽血，股静脉连续多次取血时，穿刺部位应尽量靠近股静脉远心端。