1．割(剪)尾采血

当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3～0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部做一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠每次可取0.3～0.5ml。

2．鼠尾刺血法

大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或红白蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血，用7号或8号注射针头刺入鼠静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～15mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3．眼眶静脉丛采血

采血者的左手拇指、食指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。当动物取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眼后静脉丛充血。右手持连接7号针头1ml注射器或长颈(3-4cm)硬质玻璃管(毛细管内径0.5～10mm)，使采血器与鼠面成450的夹角，由眼角刺入，针头斜面先向眼珠，刺入后再转1800，使斜面对着眼眶后界，刺入深度小鼠为2～3cm，大鼠4～5cm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出0.1～0.5mm边退边抽，若穿刺适当，血液能自然流入毛细管中。当得到所需的血量后，除去加于颈部的压力，出血即停止，同时，将采血器拔出，以防止穿刺孔出血。

若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20～25g的小鼠每次可采血0.2～0.3ml，体重200～300g鼠每次可采血0.5～1.0ml，适用于某些生物化学项目的检验。

4．断头取血

采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大小鼠的颈部皮肤，并做动物头朝下倾的姿势，右手用剪刀猛剪鼠颈，1／2～4／5的颈部剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采0.8～1.2ml，大鼠5～10ml。

5．心脏采血

鼠类心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物做深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠0.5～0.6ml，大鼠0.8～1.2ml。

6．颈静脉采血

先将动物仰位固定，切开锁骨部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。

7．腹主动脉采血

最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀剪断静脉，使血液喷入盛器。

8．股动(静)脉采血

先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈，或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15～20g小鼠采血0.2～0.3ml，大鼠0.4～0.6ml。