近年来研究表明胰岛素抵抗与代谢紊乱相关，为探讨PPA1对全身性胰岛素敏感性的影响，研究人员首先构建了PPA1基因敲除小鼠，通过高脂喂养后出现脂肪细胞功能损伤和全身代谢紊乱，并表现出多组织的胰岛素抵抗。进而通过AAV递送使PPA1基因敲除小鼠体内过表达PPA1，发现全身性代谢紊乱和胰岛素抵抗等疾病表型得到了显著改善，进一步研究证实了，PPA1可作为PPARγ靶基因，起到维持脂肪细胞线粒体功能并达到调节全身胰岛素敏感性的作用。 

通过构建PPA1基因敲除小鼠（实验组），给予正常饲料喂养，发现实验组小鼠相比于野生型（对照组）小鼠在体重、血糖水平以及葡萄糖耐量试验等方面无显著差异，但通过葡萄糖钳夹技术（检测胰岛素抵抗的“金标准”）检测，我们发现实验组小鼠的胰岛素敏感性降低，随着小鼠年龄的增长，其胰岛素抵抗不断升高，且相比于对照组小鼠的空腹血糖显著升高，表明AAP1可能在维持全身性胰岛素敏感性上发挥重要作用。

图1. PPA1基因缺陷可引起小鼠胰岛素敏感性下降。 

通过高脂喂养，我们发现在相同能量摄入的条件下，实验组小鼠的体重相比对照组增加程度更大，空腹血糖水平也更高，其中实验组小鼠的耗氧量、CO₂产生量和呼吸交换率RER均显著下降，这表明能量消耗减少是PPA1基因敲除小鼠肥胖的原因之一。在实验组小鼠的肌肉、肝脏和脂肪组织中均发现胰岛素信号传导通路受到了显著抑制，从而表现出更低的胰岛素敏感性。进而通过检测小鼠身体成分，发现小鼠出现严重的非脂肪组织的脂质沉积，即皮下脂肪组织和内脏组织的脂肪沉积减少，但在肝脏中的沉积及外周血中血清总胆固醇（TC）、甘油三酯（TG）水平显著升高。

图2. 高脂喂养小鼠脂肪量减少和异位脂肪沉积增加。 

通过对组织形态和功能进行分析，发现在实验组PPA1缺陷小鼠中，参与脂肪细胞分化功能的多个基因出现表达下降，血清脂联素水平也显著降低。因此怀疑PPA1可能是通过影响脂肪细胞功能从而导致全身性非脂肪组织脂质沉积和代谢紊乱，从而加剧胰岛素抵抗。为了验证这个假设，在PPA1缺陷小鼠的腹股沟白色脂肪组织中原位注射AAV2/9（小鼠4周龄，1×10¹² vg/ml，连续注射2次，每次12μl），实现PPA1基因的过表达。与GFP组相比，小鼠的血清脂联素显著升高，且脂肪组织炎症、肝脏脂肪变性及含量、TC/TG水平均显著得到了改善，更重要的是，小鼠肝脏和肌肉中的胰岛素敏感性得到了显著恢复。这证实了通过AAV原位注射，将目的基因递送到脂肪组织中实现PPA1的表达，可有效改善（治疗）因PPA1缺陷而导致的胰岛素抵抗。

图3. PPA1缺陷引起脂肪组织损伤与全身胰岛素抵抗有关。 

通过生信预测，发现PPARγ可直接靶向结合PPA1的启动子上，且在脂肪细胞中两者表达呈正相关。由于PPARγ被认为是脂肪生成和线粒体功能的关键调节因子，作者通过代谢组学分析，发现PPA1敲低表达后约226种线粒体代谢产物增加，132种产物减少，包括多种与线粒体功能障碍密切相关的代谢物。

图4. PPA1通过影响脂肪细胞线粒体功能及其产物发挥其对代谢紊乱的改善作用。 

PPA1缺陷会引发脂肪细胞功能损伤及多组织的胰岛素抵抗，并进一步引发全身代谢紊乱，其可能机制为PPA1缺乏会破坏脂肪细胞的线粒体生物学功能。通过AAV的递送使PPA1缺陷小鼠体内过表达PPA1，可有效改善脂肪细胞的代谢和脂质沉积，并提高胰岛素敏感性，发挥了一定的治疗效果。