使用牛S抗原和完全弗氏佐剂的混合乳剂免疫大鼠14d后，将S抗原接种于玻璃体腔，复制大鼠抗原诱导性葡萄膜视网膜炎模型。

1．模型制作方法  Wistar大鼠，体重140～180g，雌性。

(1)S抗原的纯化：将新鲜牛视网膜冰浴下研磨制成匀浆。离心(12 000r／min，60min)，取上清，饱和硫酸铵4℃沉淀过夜。离心(4 000r／min，30min)，弃上清，去离子水溶解沉淀，并移至透析袋，置0.15mol／L氯化钠溶液透析24h(换液3次)，再置于2.5mmol／L二羟基氨基甲烷盐酸盐溶液(Tris．HCl)溶液(pH7.5)中透析24h(换液3次)。透析后的样品离心(12 000r／min，4℃，60min)，取上清用于层析。使用DEAE2 Sepharose FF凝胶，XK26柱(2.6cm×16cm)，每批40个视网膜充填50ml凝胶。常规装柱，用3个柱体积层析缓冲液(20rmmol／LTris．HCl，0.01％叠氮钠，pH 7.5)平衡。加样后，3～5个柱体积层析缓冲液洗柱，流速为4～7ml／min，至杂蛋白峰回落至基线。用0～0.4mol／L氯化钠线性洗脱，流速为2ml／min，共用8个柱体积洗脱。用高盐、碱、乙醇双向流动进行柱再生、清洗和消毒。

(2)将S抗原(1mg／ml)加等量完全弗氏佐剂混合成乳剂，取0.2ml皮下注射于大鼠的后足底部致敏大鼠。14d后将10μg牛S抗原接种于实验鼠右眼玻璃体腔，建立抗原诱导性葡萄膜视网膜炎(AIU)模型。抗原接种于玻璃体腔方法为，用氯胺酮+氯丙嗪混合液(各含25～50mg／kg，肌内注射)麻醉大鼠，术眼用托吡卡胺扩瞳及1％丁卡因表面麻醉。穿刺前房后，用微量进样器在睫状体平坦部刺入玻璃体腔内注入含10μg牛S抗原的PBS溶液10μl。

2．观察指标与分析

(1)症状：模型组大鼠于玻璃体腔注射后1d即有严重的以眼后节段为主的葡萄膜炎表现。

(2)病理学检查：光镜下观察可见葡萄膜视网膜炎急性期(玻璃体腔注射后1～5d取材)出现全葡萄膜炎的病理改变，主要有前房炎症细胞渗出，玻璃体腔有大量炎症细胞及蛋白渗出物，葡萄膜和视网膜增厚并且有炎症细胞浸润，严重者感光细胞被破坏。而晚期(玻璃体腔注射10d后取材)可见视网膜局灶性炎性反应。

(3)血清抗体效价测定：双向免疫扩散法测出S抗原和抗血清之间出现清晰地反应带，血清抗体滴度为1：8～1：16。

特点：应用牛黑色素诱导的大鼠葡萄膜炎(EMIU)与人类急性前部葡萄膜炎(AAu)有着很大的共同性，二者病程持续时间相似，分别为6周和1个月，眼部体征相似，虹膜血管充血扩张，前房纤维渗出及白细胞渗出，虹膜粘连等。所不同的是，EMIU一般导致双眼炎症，而AAu一般只是单眼发病，EMIu通常在各年龄段的不同性别的大鼠都可以发生，而AAU通常只在年轻男性发生，因此不难看出，EMIU委实是研究人类葡萄膜炎的很好的动物模型。